- Код статьи
- S30345294S0320972525100061-1
- DOI
- 10.7868/S3034529425100061
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 90 / Номер выпуска 10
- Страницы
- 1487-1496
- Аннотация
- Процесс передачи и трансформации сигнала в центральной нервной системе приводит к активному энергетическому метаболизму с высоким потреблением глюкозы и кислорода. Образующиеся в результате этих процессов активные формы кислорода (АФК) участвуют в передаче сигнала в клетке, но перепроизводство АФК ведет к развитию окислительного стресса. Окислительный стресс и агрегация α-синуклеина выступают признанными активаторами нейрональной гибели при болезни Паркинсона. Тем не менее гораздо меньше известно о физиологической роли мономерных синуклеинов. Используя переживающие срезы мозга и первичную нейрон-глиальную культуру, полученные из трансгенных животных с нокаутом генов α-, β- и γ-синуклеинов, мы изучили роль этих белков в производстве АФК и энергетическом метаболизме. Мы обнаружили, что отсутствие синуклеинов приводит к пониженному производству АФК по сравнению с клетками дикого типа. Ингибитор ксантиноксидазы (КСО) приводил к уменьшению продукции АФК в клетках дикого типа и в срезах мозга с нокаутом по β-синуклеину, в то время как в срезах при отсутствии α- или γ-синуклеинов ингибирование КСО не происходило, что говорит о возможной регуляции этого фермента данными белками. Нокаут по α- и γ-синуклеинам приводил к понижению митохондриального мембранного потенциала и уменьшению энергетической емкости (в форме ATP), что может быть одним из механизмов регуляции КСО синуклеинами.
- Ключевые слова
- синуклеины активные формы кислорода ксантиноксидаза нейрон астроцит
- Дата публикации
- 01.10.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 12
Библиография
- 1. Angelova, P. R., Esteras, N., and Abramov, A. Y. (2021) Mitochondria and lipid peroxidation in the mechanism of neurodegeneration: finding ways for prevention, , 41, 770-784, https://doi.org/10.1002/med.21712.
- 2. Gleichmann, M., and Mattson, M. P. (2011) Neuronal calcium homeostasis and dysregulation, , 14, 1261-1273, https://doi.org/10.1089/ars.2010.3386.
- 3. Angelova, P. R., and Abramov, A. Y. (2018) Role of mitochondrial ROS in the brain: from physiology to neurodegeneration, , 592, 692-702, https://doi.org/10.1002/1873-3468.12964.
- 4. Gandhi, S., and Abramov, A. Y. (2012) Mechanism of oxidative stress in neurodegeneration, , 2012, 428010, https://doi.org/10.1155/2012/428010.
- 5. Burrage, E. N., Colbentz, T., Prabhu, S. S., Childers, R., Bryner, R. W., Lewis, S. E., DeVallance, E., Kelley, E. E., and Chandler, P. D. (2023) Xanthine oxidase mediates chronic stress-induced cerebrovascular dysfunction and cognitive impairment, , 43, 905-920, https://doi.org/10.1177/0271678X231152551.
- 6. Angelova, P. R., Myers, I., and Abramov, A. Y. (2023) Carbon monoxide neurotoxicity is triggered by oxidative stress induced by ROS production from three distinct cellular sources, , 60, 102598, https://doi.org/10.1016/j.redox.2022.102598.
- 7. Abramov, A. Y., Scorziello, A., and Duchen, M. R. (2007) Three distinct mechanisms generate oxygen free radicals in neurons and contribute to cell death during anoxia and reoxygenation, , 27, 1129-1138, https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4468-06.2007.
- 8. Xia, Y., and Zweier, J. L. (1995) Substrate control of free radical generation from xanthine oxidase in the postischemic heart, , 270, 18797-18803, https://doi.org/10.1074/jbc.270.32.18797.
- 9. Kinugasa, Y., Ogino, K., Furuse, Y., Shiomi, T., Tsutsui, H., Yamamoto, T., Igawa, O., Hisatome, I., and Shigemasa, C. (2003) Allopurinol improves cardiac dysfunction after ischemia-reperfusion via reduction of oxidative stress in isolated perfused rat hearts, , 67, 781-787, https://doi.org/10.1253/circj.67.781.
- 10. Thies, J. L., Willicott, K., Craig, M. L., Greene, M. R., DuGay, C. N., Caldwell, G. A., and Caldwell, K. A. (2023) Xanthine dehydrogenase is a modulator of dopaminergic neurodegeneration in response to bacterial metabolite exposure in , , 12, 1170, https://doi.org/10.3390/cells12081170.
- 11. Abramov, A.Y., Potapova, E. V., Dremin, V. V., and Dunaev, A. V. (2020) Interaction of oxidative stress and misfolded proteins in the mechanism of neurodegeneration, , 10, 1-14, https://doi.org/10.3390/life10070101.
- 12. Calabresi, P., Mechelli, A., Natale, G., Volpicelli-Daley, L., Di Lazzaro, G., and Ghiglieri, V. (2023) Alpha-synuclein in Parkinson's disease and other synucleinopathies: from overt neurodegeneration back to early synaptic dysfunction, , 14, 176, https://doi.org/10.1038/s41419-023-05672-9.
- 13. Negi, S., Khurana, N., and Duggal, N. (2024) The misfolding mystery: α-synuclein and the pathogenesis of Parkinson's disease, , 177, 105760, https://doi.org/10.1016/j.neuint.2024.105760.
- 14. Magistrelli, L., Contaldi, E., and Comi, C. (2021) The impact of SNCA variations and its product alpha-synuclein on non-motor features of Parkinson's disease, , 11, 804, https://doi.org/10.3390/life11080804.
- 15. Guo, Y., Sun, Y., Song, Z., Zheng, W., Xiong, W., Yang, Y., Yuan, L., and Deng, H. (2021) Genetic analysis and literature review of SNCA variants in Parkinson's disease, , 13, 648151, https://doi.org/10.3389/fnagi.2021.648151.
- 16. Clayton, D. F., and George, J. M. (1998) The synucleins: a family of proteins involved in synaptic function, plasticity, neurodegeneration and disease, , 21, 249-254, https://doi.org/10.1016/S0166-2236 (97)01213-7.
- 17. Guschina, I. A., Ninkina, N., Roman, A., Pokrovskiy, M. V., and Buchman, V. L. (2021) Triple-knockout, synuclein-free mice display compromised lipid pattern, , 26, 1-22, https://doi.org/10.3390/molecules26113078.
- 18. George, J. M. (2002) The synucleins, , 3, REVIEWS3002, https://doi.org/10.1186/gb-2001-3-1-reviews3002.
- 19. Ninkina, N., Connor-Robson, N., Ustyugov, A. A., Tarasova, T. V., Shelkovnikova, T. A., and Buchman, V. L. (2015) A novel resource for studying function and dysfunction of α-synuclein: mouse lines for modulation of endogenous gene expression, , 5, 1-6, https://doi.org/10.1038/srep16615.
- 20. Kokhan, V. S., Van'kin, G. I., Bachurin, S. O., and Shamakina, I. Y. (2013) Differential involvement of the gamma-synuclein in cognitive abilities on the model of knockout mice, , 14, 53, https://doi.org/10.1186/1471-2202-14-53.
- 21. Ninkina, N., Tarasova, T. V., Chaprov, K. D., Roman, A. Y., Kukharsky, M. S., Kolik, L. G., Ovchinnikov, R., Ustyugov, A. A., Durnev, A. D., and Buchman, V. L. (2020) Alterations in the nigrostriatal system following conditional inactivation of α-synuclein in neurons of adult and aging mice, , 91, 76-87, https://doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2020.02.026.
- 22. Greten-Harrison, B., Polydoro, M., Morimoto-Tomita, M., Diao, L., Williams, A. M., Nie, E. H., Makani, S., Tian, N., Castillo, P. E., Buchman, V. L., and Chandra, S. S. (2010) αβγ-Synuclein triple knockout mice reveal age-dependent neuronal dysfunction, , 107, 19573-19578, https://doi.org/10.1073/pnas.1005005107.
- 23. Vorobyov, V., Deev, A., Sukhanova, I., Morozova, O., Oganesyan, Z., Chaprov, K., and Buchman, V. L. (2022) Loss of the synuclein family members differentially affects baseline- and apomorphine-associated EEG determinants in single-, double- and triple-knockout mice, , 10, 3128, https://doi.org/10.3390/biomedicines10123128.
- 24. Furuhashi, M. (2020) New insights into purine metabolism in metabolic diseases: role of xanthine oxidoreductase activity, , 319, E827-E834, https://doi.org/10.1152/ajpendo.00378.2020.
- 25. Starr, L. A., McKay, L. E., Peter, K. N., Seyfarth, L. M., Berkowitz, L. A., Caldwell, K. A., and Caldwell, G. A. (2023) Attenuation of dopaminergic neurodegeneration in a Parkinson's model through regulation of xanthine dehydrogenase (XDH-1) expression by the RNA editase, ADR-2, , 11, 20, https://doi.org/10.3390/jdb11020020.
- 26. Ludtmann, M. H. R., Angelova, P. R., Ninkina, N. N., Gandhi, S., Buchman, V. L., and Abramov, A. Y. (2016) Monomeric alpha-synuclein exerts a physiological role on brain ATP synthase, , 36, 10510-10521, https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1659-16.2016.
- 27. Ludtmann, M. H. R., Angelova, P. R., Horrocks, M. H., Choi, M. L., Rodrigues, M., Baev, A. Y., Berezhnov, A. V., Yao, Z., Little, D., Banushi, B., Al-Menhali, A. S., Ranasinghe, R. T., Whiten, D. R., Yapom, R., Dolt, K. S., Devine, M. J., Gissen, P., Kunath, T., Jaganjac, M., Pavlov, E. V., Klenerman, D., Abramov, A. Y., and Gandhi, S. (2018) α-synuclein oligomers interact with ATP synthase and open the permeability transition pore in Parkinson's disease, , 9, 2293, https://doi.org/10.1038/s41467-018-04422-2.
- 28. Abramov, A. Y., Berezhnov, A. V., Fedotova, E. I., Zinchenko, V. P., and Dolgacheva, L. P. (2017) Interaction of misfolded proteins and mitochondria in neurodegenerative disorders, , 45, 1025-1033, https://doi.org/10.1042/BST20170024.
- 29. Deas, E., Cremades, N., Angelova, P. R., Ludtmann, M. H. R., Yao, Z., Chen, S., Horrocks, M. H., Banushi, B., Little, D., Devine, M. J., Gissen, P., Klenerman, D., Dobson, C.M., Wood, N. W., Gandhi, S., and Abramov, A. Y. (2016) Alpha-synuclein oligomers interact with metal ions to induce oxidative stress and neuronal death in Parkinson's disease, , 24, 376-391, https://doi.org/10.1089/ars.2015.6343.
- 30. Angelova, P. R., Choi, M.L., Berezhnov, A. V., Horrocks, M. H., Hughes, C. D., De, S., Rodrigues, M., Yapom, R., Little, D., Dolt, K. S., Kunath, T., Devine, M.J., Gissen, P., Shchepinov, M. S., Sylantyev, S., Pavlov, E. V., Klenerman, D., Abramov, A. Y., and Gandhi, S. (2020) Alpha synuclein aggregation drives ferropiosis: an interplay of iron, calcium and lipid peroxidation, , 27, 2781-2796, https://doi.org/10.1038/s41418-020-0542-z.
- 31. Moorhouse, P. C., Grootveld, M., Halliwell, B., Quinlan, J. G., and Gutteridge, J. M. C. (1987) Allopurinol and oxypurinol are hydroxyl radical scavengers, , 213, 23-28, https://doi.org/10.1016/0014-5793 (87)81458-8.
- 32. Grootveld, M., Halliwell, B., and Moorhouse, C. P. (1987) Action of uric acid, allopurinol and oxypurinol on the myeloperoxidase-derived oxidant hypochlorous acid, , 4, 69-76, https://doi.org/10.3109/10715768709088090.
- 33. Harrison, R. (2004) Physiological roles of xanthine oxidoreductase, , 363-375, https://doi.org/10.1081/DMR-120037569.
- 34. Guschina, I., Millership, S., O'Donnell, V., Ninkina, N., Harwood, J., and Buchman, V. (2011) Lipid classes and fatty acid patterns are altered in the brain of γ-synuclein null mutant mice, , 46, 121-130, https://doi.org/10.1007/s11745-010-3486-0.
- 35. Millership, S., Ninkina, N., Rochford, J. J., and Buchman, V. L. (2013) γ-synuclein is a novel player in the control of body lipid metabolism, , 2, 276-278, https://doi.org/10.4161/adip.25162.
- 36. Zhang, H., Kouadio, A., Cartledge, D., and Godwin, A. K. (2011) Role of gamma-synuclein in microtubule regulation, , 317, 1330-1339, https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2010.10.013.
- 37. Angelova, P. R., Esteras, N., Evans, J., Kostic, M., Melki, R., Prehn, J. H. M., Gandhi, S., Abramov, A. Y. (2025) α-synuclein fibrils per se but not α-synuclein seeded aggregation causes mitochondrial dysfunction and cell death in human neurons, , 86, 103817, https://doi.org/10.1016/j.redox.2025.103817.